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求一分 蛋白質電泳詳細過程 還有需要的溶液 已有2人參與
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想做蛋白質電泳試驗 但是我們實驗室只有 DNA電泳的一些藥品還有儀器 瓊脂糖凝膠 EB染色 求一份蛋白質電泳的 詳細步驟 還有所需藥品 |
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實驗用試劑 低分子量蛋白Maker TAKARA 4*上樣緩沖 TAKARA Pagn Blue protein staining solution Fermentas 試劑的配制 1. 貯液的配制 (1) 凝膠儲液 取30g丙烯酰胺+0.8g甲叉雙丙烯酰胺0.8g ,先用35ml雙蒸水溶解,攪拌,直到溶液變成透明,再用雙蒸水稀釋至100ml,過濾。棕色瓶4℃保存一個月。 (2)1 mol/l Tris-HCL (PH 8.8) 12.1g Tris(三羥甲基氨基甲烷)溶解在80ml雙蒸水中,用4mol/l鹽酸調PH至8.8。再用雙蒸水稀釋至100ml,保存在4℃冰箱。 (3)1.0 mol/l Tris-HCL (PH 6.8) 6.06g Tris溶解在40ml雙蒸水中,用用4mol/l鹽酸調PH至6.8。再用雙蒸水稀釋至50ml,保存在4℃冰箱。 (4)10%過硫酸銨(APS) 0.1g過硫酸銨+1ml雙蒸水。使用前新鮮配制 (5)Tris–甘氨酸電泳緩沖液的配制(25mmol/L Tris;250mmol/L甘氨酸(pH8.3)) 30.3gTris+ 144.2g甘氨酸+ 10gSDS,雙蒸水定容至1L。 每次使用時10倍稀釋。 (6) 樣品緩沖液 使用4*SDS-PAGE loading buffer(Takara公司),上樣緩沖與樣品比例1:3混勻,之后煮沸5min。 2. 凝膠的配制 溶液成分 分離膠12.5% 10ml 濃縮膠4% 5ml H2O 2.05 3.51 凝膠儲液 4.15 0.835 1.0mol/l Tris-Hcl(PH8.8) 3.75 --- 1.0mol/l Tris-Hcl(PH6.8) --- 0.625 10%SDS溶液 0.08 0.06 10%過硫酸銨 0.1 0.1 TEMED 0.01 0.006 注:上表所標體積為配制兩塊膠的用量。若配制一塊或多塊,可按比例減半或加倍。 具體步驟如下: 1、樣品制備:40 μL蛋白+5*上樣緩沖液10 μL,煮沸5 min,冷卻后放冰箱下層保存,備用 2、制膠 1) 用專用的醫(yī)用棉口罩將膠板擦拭干凈,電泳槽清洗干凈,組裝模具。 注:必須使用專用的棉口罩擦拭膠板,且輕輕的向一個方向擦拭,以免劃壞膠板。 膠板和電泳槽未清洗干凈,會影響電泳效果。 2) 按上表成分配制分離膠,迅速搖勻,沿膠的一邊,迅速灌入分離膠,注意勿打入氣泡,迅速水封。 3) 放置1 h。 4) 傾去蒸餾水,用濾紙將未倒干凈的水吸干。 5) 按上表成分配制濃縮膠,迅速搖勻,沿膠的一邊,迅速灌入濃縮膠,注意勿打入氣泡,迅速插入齒梳。 6) 放置1h。 注:新配置的凝膠,室溫放置5h,使膠充分凝聚、混勻,之后再使用,效果更好。忌馬上電泳。 3、配制電泳緩沖及上樣 取配好的10*電泳緩沖130ml,用蒸餾水稀釋至1300ml。 將制好的凝膠用電泳夾固定至電泳槽中。注:短板朝里。若只跑一塊膠,電泳夾的對面也必須放置一塊電泳板。 倒入電泳緩沖液,液面至短板和長板之間。 每孔上樣量最大20ul。蛋白Maker上樣量7ul。 4、 電泳 80V 45min;120V 45min。 注:若120v 45min后,溴酚藍指示劑前沿距離電泳板下端太遠,可延長電泳時間,或適當增加電壓,待跑至距電泳板下端1cm時停止電泳。 5、 剝膠 剝膠過程必須浸在蒸餾水中進行。 6、 水洗 電泳結束后,用蒸餾水洗膠三次,每次10min。 7、 染色 將膠至于脫色搖床上,使用考馬斯亮藍染色液(fermentas公司)過夜染色。 注:考馬斯亮藍染色液的使用,請嚴格按照染色液說明上的操作步驟進行。 考馬斯亮藍染液可重復利用3次,使用一次的染液請倒回使用一次的回收瓶中,使用過兩次的染色液倒回使用兩次的回收瓶中,用滿三次才可廢棄。 8、 脫色洗 脫色液洗脫3次,每次1小時,洗去背景色。拍照。 9、 清洗膠板和電泳槽。 注:清洗和擦拭膠板時,請使用專用的醫(yī)用棉口罩清洗,用水沖洗時,輕輕擦拭,將殘留的膠清洗干凈,注意不要太用力,以免劃壞膠板。洗好后,放置專用的膠架上晾干,晾干后放入相應的膠盒中。 10、 清理實驗臺,將實驗儀器擺放整齊。 希望對你有用 |
新蟲 (初入文壇)
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