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[求助]
PMD-19-t載體連接問題,真心求助 已有18人參與
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| 目的基因500多bp,pcr用的酶是:Premix Taq (TaKaRa Taq Version 2.0 plus dye),膠回收后連接,怎么都連接不上,求幫助。 |
木蟲 (正式寫手)
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轉(zhuǎn)化后可以提質(zhì)粒跑膠檢測(cè)大小,那說明LZ的平板上還是長(zhǎng)出來假陽性轉(zhuǎn)化子了,平板上能有多少轉(zhuǎn)化子? T載體和連接酶都是新的還是在冰箱里放了很久的東西? 1.如果轉(zhuǎn)化子較多的話有必要做個(gè)藍(lán)白斑篩選,篩查一下你的T載體有問題沒有。以平板上深藍(lán)色轉(zhuǎn)化子作為計(jì)算自連率的標(biāo)準(zhǔn)。 2.如果轉(zhuǎn)化子就那么幾個(gè),感受態(tài)做一個(gè)陽性對(duì)照,排除感受態(tài)的問題后,還是要從基因載體的濃度和比例以及連接條件上入手: 按照pmd18t的推薦體系:10ul體系:0.03pmol載體:0.1—0.3pmol基因+5ul solutionI 按照NEB的體系:20ul體系:0.02pmol載體:0.06pmol基因+10X T4 ligase buffer+1ul ligase 因此,你的基因如果真是70ng/ul的話,2ul就高達(dá)0.42pmol的濃度,基因過多反而會(huì)降低基因與載體的接觸效率,其次我不知道LZ你的2Xbuffer從哪里來的,一般都是10Xbuffer,管子打開一股濃濃的DTT味道才對(duì),連接buffer那么稀很難保證長(zhǎng)期存放的效果。連接效率低的問題多半在此! 至于連接條件的優(yōu)化,如果遇到很難連接的體系,我一般會(huì)嘗試二次連接,以Takara10ul連接體系為例,按照上述體系16度過夜連接,早上補(bǔ)加連接酶和連接buffer稀釋到20ul,16度8h 或25度4h,下午3管并1管與感受態(tài)混合轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)化子只多不少。 3. 如果上述篩查不解決問題的話,只能說明基因沒加上A,將PCR產(chǎn)物加入rTaq及buffer 補(bǔ)加10mM dATP 72度30min加A處理!~ |

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