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測酶活前處理心得 已有6人參與
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一般一瓶動物細胞長滿后用胰酶消化,消化完以后用D-Hinks吹打下來,4℃,1000轉(zhuǎn),6~10min 離心。倒掉上清,再用D-Hinks重新分散,4℃,1000轉(zhuǎn),6~10min 離心,倒掉上清(如果暫時不要測酶活的話,直接將離心后的沉淀凍于-80℃,可保存2~3個月,用時直接加生理鹽水進行后處理即可)。再用生理鹽水重新分散,槍頭打勻,超聲波破碎,一般一瓶動物細胞加1mL生理鹽水,一般用總工作時間300S,,開5S,停10S,槽溫度稍設高點,一般50℃(此溫度與你EP管內(nèi)的溫度無關,但是溫度探針伸到反應體系中的溫度就得設低些),20%功率。破碎完后4℃,12000轉(zhuǎn),5min 離心(看底部的沉淀多少,破碎完全的沉淀應該是很少的,如果還很多,重新打散后加時間再破碎)。將上清取出搖勻后檢測蛋白濃度,我用的是考馬斯亮藍+BSA法。然后蛋白用于即時檢測,暫時不用的話立刻凍在-80℃,可保存2~3天,但破碎后的蛋白最好當天檢測,不然活性會受到影響。 [ Last edited by silicare on 2014-5-14 at 18:30 ] |
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