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楊玉煥123木蟲 (小有名氣)
陽光
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[求助]
載體去磷酸化后的回收問題 已有5人參與
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本人用的是單酶切,自連現(xiàn)象很嚴重,需要去磷酸化,選用的是CIAP,按照說明50度反應30分鐘后采用以下2種方法: 1、PCR產(chǎn)物純化試劑盒回收 2、65度反應30分鐘使酶失活,然后用等體積的酚/氯仿/異戊醇和氯仿/異戊醇抽提一次,之后加入1/20倍體積5M的氯化鈉和2倍體積的無水乙醇(加乙醇的時候明顯能看到絮狀產(chǎn)生),-20℃沉淀1h,13000rpm離心2min后棄上清,然后用70%的乙醇洗滌一遍,吹干后加10微升無菌去離子水溶解 各 取2微升1、2所得溶液進行電泳檢測,1能看到DNA條帶,2沒有,對二者分別進行載體的連接反應(實驗組:載體、片段、T4連接酶、T4buffer,對照組:載體、T4連接酶、T4buffer)、轉化實驗,結果為方法1的實驗組和對照組上克隆子數(shù)目都很多,挑取實驗組進行質?斐榘l(fā)現(xiàn)都是載體自連產(chǎn)生的克隆。。。。方法2的實驗組和對照組均沒有克隆子生長。。。 后來又做過幾次方法2 ,發(fā)現(xiàn)方法2的去磷酸化效果挺好的,對照有10個左右克隆子,實驗組片段與載體也連上了,但是由于每次去磷酸化之后載體回收后電泳都檢測不到,濃度相當?shù)牡。。。,沒法獲得足夠多的克隆子(我需要的是建立基因組文庫,克隆子數(shù)目很大)。目前,正在嘗試延長磷酸化反應時間,再用PCR產(chǎn)物純化試劑盒回收,請問各位大俠對于方法2的DNA回收有沒什么好的建議?我看到有的文獻是加入1/10體積的3M醋酸鈉,pH為5.2,這又是為什么呢?加鹽的目的不就是為了中和電荷使DNA更容易沉淀么?跟所加鹽溶液的pH沒有太大的關系吧??求指教 |
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一般乙醇沉淀的效率會非常高的,基本都在90%以上啊。和你們的區(qū)別就是我們用的是5.2的醋酸鈉,然后我們離心是10分鐘。要不你延長離心時間,都能看見絮狀沉淀了。 你要是實在不行就換膠回收試劑盒啊。國產(chǎn)天跟阿之類的都特別好用。 ps你們用的啥ciap,竟然反應溫度為50度啊 |
木蟲 (小有名氣)
陽光
木蟲 (小有名氣)
陽光
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