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楊玉煥123木蟲 (小有名氣)
陽光
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[求助]
載體去磷酸化后的回收問題 已有5人參與
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本人用的是單酶切,自連現(xiàn)象很嚴(yán)重,需要去磷酸化,選用的是CIAP,按照說明50度反應(yīng)30分鐘后采用以下2種方法: 1、PCR產(chǎn)物純化試劑盒回收 2、65度反應(yīng)30分鐘使酶失活,然后用等體積的酚/氯仿/異戊醇和氯仿/異戊醇抽提一次,之后加入1/20倍體積5M的氯化鈉和2倍體積的無水乙醇(加乙醇的時候明顯能看到絮狀產(chǎn)生),-20℃沉淀1h,13000rpm離心2min后棄上清,然后用70%的乙醇洗滌一遍,吹干后加10微升無菌去離子水溶解 各 取2微升1、2所得溶液進(jìn)行電泳檢測,1能看到DNA條帶,2沒有,對二者分別進(jìn)行載體的連接反應(yīng)(實(shí)驗(yàn)組:載體、片段、T4連接酶、T4buffer,對照組:載體、T4連接酶、T4buffer)、轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn),結(jié)果為方法1的實(shí)驗(yàn)組和對照組上克隆子數(shù)目都很多,挑取實(shí)驗(yàn)組進(jìn)行質(zhì)?斐榘l(fā)現(xiàn)都是載體自連產(chǎn)生的克隆。。。。方法2的實(shí)驗(yàn)組和對照組均沒有克隆子生長。。。 后來又做過幾次方法2 ,發(fā)現(xiàn)方法2的去磷酸化效果挺好的,對照有10個左右克隆子,實(shí)驗(yàn)組片段與載體也連上了,但是由于每次去磷酸化之后載體回收后電泳都檢測不到,濃度相當(dāng)?shù)牡汀。。,沒法獲得足夠多的克隆子(我需要的是建立基因組文庫,克隆子數(shù)目很大)。目前,正在嘗試延長磷酸化反應(yīng)時間,再用PCR產(chǎn)物純化試劑盒回收,請問各位大俠對于方法2的DNA回收有沒什么好的建議?我看到有的文獻(xiàn)是加入1/10體積的3M醋酸鈉,pH為5.2,這又是為什么呢?加鹽的目的不就是為了中和電荷使DNA更容易沉淀么?跟所加鹽溶液的pH沒有太大的關(guān)系吧??求指教 |
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會不會是試劑不純?或者污染了DNA酶什么的?我的操作和你的差不多,把完整步驟寫出來吧: 1、加入1/20倍體積5M的氯化鈉,加入1/10電泳buffer(主要為了帶藍(lán)色好看清分層)。 2、加入等體積氯仿充分混勻,12000rpm 3min,保留上清。 3、加入2倍體積乙醇,充分混勻,12000rpm 10min,小心吸走上清。 4、加入適量75%乙醇,12000rpm 2min,小心吸走上清,用10uL槍頭在不碰到沉淀的前提下盡量吸走乙醇。 5、室溫晾干,或者放37度培養(yǎng)箱中晾干,或者放真空泵中抽干。 6、加雙蒸水溶解。 和回收率相關(guān)的關(guān)鍵步驟是第2步上清的保留量和第3步離心時間。然后就是注意小心不要搞丟了DNA沉淀了. 要找原因的話,建議各個步驟都取一點(diǎn)液體出來跑膠看看DNA的量。 |
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哦,寫錯了,是氯仿異戊醇。沒用過酚。 我在200 uL PCR管里操作,加幾十到100 uL乙醇吧。PCR管套到0.5 mL離心管再套到1.5 mL離心管里再去離心。 你這是要做載體單酶切去磷酸化嗎?有些限制酶的buffer和CIP是兼容的,譬如Thermo的fast digest。我是用Thermo的快酶,20uL 體系37度酶切反應(yīng)半小時后,直接加Takara的cip 0.5~1 uL,繼續(xù)37度反應(yīng)1小時,高溫失活,跑膠回收。這樣就省下一個回收步驟了。 |
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一般乙醇沉淀的效率會非常高的,基本都在90%以上啊。和你們的區(qū)別就是我們用的是5.2的醋酸鈉,然后我們離心是10分鐘。要不你延長離心時間,都能看見絮狀沉淀了。 你要是實(shí)在不行就換膠回收試劑盒啊。國產(chǎn)天跟阿之類的都特別好用。 ps你們用的啥ciap,竟然反應(yīng)溫度為50度啊 |
木蟲 (小有名氣)
陽光
木蟲 (小有名氣)
陽光
木蟲 (正式寫手)
鐵蟲 (初入文壇)

新蟲 (著名寫手)
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對于2我想說幾點(diǎn),畢竟我回收小RNA都成功了,還是PAGE回收,所以我有發(fā)言權(quán),金幣多多的給。 (1)我沒有見過加Nacl進(jìn)行促沉的,這種鹽離子也很難去除,但是加醋酸鈉時可以的,畢竟這個是弱酸強(qiáng)堿鹽類,具有一定的緩沖性能。(2)-20度促沉也是對的,但是你的離心時間是否非常短,我做一般的都10min,做小RNA得高速離心半小時,你才2分鐘。(3)利用酚仿抽提也會損失20-40%。(4)最后你又洗了一遍也會損失一點(diǎn)。所以綜合因素2不見產(chǎn)物不足為怪。 |
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