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小木蟲論壇-學術科研互動平臺 » 生物醫(yī)藥區(qū) » 分子生物 » 綜合其他 » 載體去磷酸化后的回收問題
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楊玉煥123木蟲 (小有名氣)
陽光
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[求助]
載體去磷酸化后的回收問題 已有5人參與
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本人用的是單酶切，自連現象很嚴重，需要去磷酸化，選用的是CIAP，按照說明50度反應30分鐘后采用以下2種方法： 1、PCR產物純化試劑盒回收 2、65度反應30分鐘使酶失活，然后用等體積的酚/氯仿/異戊醇和氯仿/異戊醇抽提一次，之后加入1/20倍體積5M的氯化鈉和2倍體積的無水乙醇（加乙醇的時候明顯能看到絮狀產生），-20℃沉淀1h，13000rpm離心2min后棄上清，然后用70%的乙醇洗滌一遍，吹干后加10微升無菌去離子水溶解 各 取2微升1、2所得溶液進行電泳檢測，1能看到DNA條帶，2沒有，對二者分別進行載體的連接反應（實驗組：載體、片段、T4連接酶、T4buffer，對照組：載體、T4連接酶、T4buffer）、轉化實驗，結果為方法1的實驗組和對照組上克隆子數目都很多，挑取實驗組進行質粒快抽發(fā)現都是載體自連產生的克隆。。。。方法2的實驗組和對照組均沒有克隆子生長。。。 后來又做過幾次方法2 ，發(fā)現方法2的去磷酸化效果挺好的，對照有10個左右克隆子，實驗組片段與載體也連上了，但是由于每次去磷酸化之后載體回收后電泳都檢測不到，濃度相當的低。。。，沒法獲得足夠多的克隆子（我需要的是建立基因組文庫，克隆子數目很大）。目前，正在嘗試延長磷酸化反應時間，再用PCR產物純化試劑盒回收，請問各位大俠對于方法2的DNA回收有沒什么好的建議？我看到有的文獻是加入1/10體積的3M醋酸鈉，pH為5.2，這又是為什么呢？加鹽的目的不就是為了中和電荷使DNA更容易沉淀么？跟所加鹽溶液的pH沒有太大的關系吧？？求指教 |
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2014神蟲浮云
鐵蟲 (初入文壇)
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楊玉煥123
木蟲 (小有名氣)
陽光
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3樓2014-01-17 10:54:17
4樓2014-01-17 11:08:22
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