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PCR擴(kuò)增嚴(yán)重彌散,但是以前用同樣方法,條件和試劑都是結(jié)果非常好的 已有5人參與
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核酸生物學(xué)實驗經(jīng)驗 |
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PCR擴(kuò)增時出現(xiàn)涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶的原因與對策 凌波麗 2013年8月23日總結(jié)(第二次修訂,加上序號,使文章的層次清晰,另外修正了錯漏之處) 2013年10月9日凌晨第三次修改補(bǔ)充。 PCR擴(kuò)增有時出現(xiàn)涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶。 其原因往往由于酶量過多或酶的質(zhì)量差或酶的專一性不夠,DNA模板量過大,dNTP濃度過高,Mg2+濃度過高,退火溫度過低,循環(huán)次數(shù)過多,模板長于3kb所引起。 其對策有: 1.減少酶量(一般以2單位Taq DNA聚合酶為基點,分梯度上下調(diào)一調(diào),其他酶也差不多如此濃度,可以參考說明書);加強(qiáng)DNA聚合酶的專一性或調(diào)換另一來源的專一性更好的DNA聚合酶。 2. 增加DNA聚合酶的專一性。 (1)改用專一性更強(qiáng)的DNA聚合酶,或者使用兩種不同的DNA聚合酶,減低酶量或調(diào)換另一來源的專一性高的酶。更換DNA聚合酶時,酶量不要太大,以免出現(xiàn)特異性擴(kuò)增。 (2)酶制劑中的甘油可能也是干擾因素?梢约尤敕磻(yīng)體系之前用超濾去除酶制劑中的甘油,若此操作引起酶的濃度過高,可以適當(dāng)加雙蒸餾水稀釋。 (3)為了加強(qiáng)Taq DNA聚合酶的專一性。 的專一性,可在反應(yīng)體系中加入:1-1.5mol/L的甜菜堿或者5%的DMSO可以提高PCR擴(kuò)增效率,兩者可以增加Taq DNA聚合酶的穩(wěn)定性。 3.適當(dāng)減少dNTP的濃度;減少dNTP的濃度一般需要與降低Mg2+濃度同方向偶聯(lián)進(jìn)行,但是不必按同樣的比例。 4.適當(dāng)降低Mg2+濃 度,可以采用梯度遞減方式,以每次0.5mol/L遞減,但是Mg2+的終濃度不要低于1.0mol/L。 5. 縮短PCR反應(yīng)的退火溫度時間或調(diào)高復(fù)性溫度。沒有重新設(shè)計引物之前,不要大范圍地變動反應(yīng)體系的復(fù)性溫度,要在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)變動。如果出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增,則在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)把PCR反應(yīng)的復(fù)性溫度提高1-3度。 6.使用梯度降低PCR。在以基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增時,非特異性擴(kuò)增較多,這時,最初的退火溫度選用比Tm高5-10度。然后每隔1個循環(huán),退火溫度降低1-2度,直至到達(dá)正常的Tm附近的退火溫度。 7.采用使用專一性更強(qiáng)的梯度降低PCR、熱啟動PCR和巢式PCR。使用熱啟動模式。使用熱啟動時可以購買商用的PCR熱啟動酶,也可以用石蠟隔離模式。巢式PCR也有現(xiàn)成的試劑盒可以購買。 8. 保證PCR反應(yīng)的DNA模板的質(zhì)量,要用電泳檢測一下分子量和純度,質(zhì)量不好則要重新提取和純化DNA模板;適當(dāng)增加DNA模板量,減少循環(huán)次數(shù)。 9.以上措施都不行時,最后就只能重新設(shè)計引物,加強(qiáng)引物的專一性。 10.適當(dāng)減少DNA模板量。 11.適當(dāng)減少循環(huán)次數(shù),一般也就循環(huán)25次就差不多了。 12.如果樓主的PCR模板是3kb或者更大,用普通PCR效果大概不會很理想,應(yīng)該考慮使用Long-Range PCR。 樓主三次的實驗流程和試劑一樣,但這次效果如此不好,我個人認(rèn)為:首先考慮酶的質(zhì)量、模板質(zhì)量(放久了模板也可能發(fā)生降解,尤其是反復(fù)凍融)、其他的試劑的質(zhì)量,實際操作是不是失準(zhǔn)等問題(可能一些操作細(xì)節(jié)由于以前的成功,所以這次比較放松了,實際的操作并不標(biāo)準(zhǔn))等。 |
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