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[求助]
構(gòu)建pBI121表達載體,目的基因與載體連接不上 已有1人參與
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連續(xù)做了兩個多月的表達載體構(gòu)建了,始終不成功,希望各位大俠給與指點,具體情況如下: 載體為pBI121,目的基因700bp左右(兩端分別加有BamHI 和SacI酶切位點,連接在pmd18-simple上),用這兩個酶分別對pBI121和目的基因進行雙酶切(先是BamHI 30度 4h,沉淀回收后SacI 37度 4h),電泳檢測(酶切完全)并回收,回收后電泳檢測條帶清晰可見,且大小也是對的。將回收的載體片段與目的基因用連接酶連接(用過寶生物的T4連接酶,現(xiàn)改為NEB的),轉(zhuǎn)化、涂板,來來回回做了不知道多少遍了,現(xiàn)在是在是不知道該怎么辦了,哪位做過、遇到過這些問題的大俠幫幫吧,謝謝啦! |
雜項 |

鐵蟲 (初入文壇)
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我也做過重組的質(zhì)粒的構(gòu)建,同樣的問題我也遇見過。應(yīng)該是這樣的: 1.你做酶切的時候時間過長了,分布雙酶切時,每個酶的酶切時間最多也就兩個小時,酶的用量,你可以查閱酶的說明書。你的分布雙酶切沒必要那么做,我們實驗室也做過你說的這兩個酶的分布雙酶切,就是從低鹽到高鹽的順序就可以了,你可以先用SacI酶切,然后再用BamHI酶切,酶切體系如下: 50μl的體系里加入SacI 1.2μl,DNA約1μg,其他的Buffer和水,你看著體系補就行了,酶切1.5h;然后再加大體系,擴成150μl的體系,加入BamHI2μl,Buffer和水補足。各自酶在最適的Buffer里切割。補充一下,單酶切一個之后,為了排除對下一個酶的影響,你可以高溫使酶失活一下。不做這一步也行的。 2.載體和目的片段都要照著上述的步驟分布雙酶切,不知道你切下來的片段大小了,如果切下來的片段大小跟留下來的差不多,建議你割膠回收,如果差別很大,就可以用生工生物的PCR產(chǎn)物純化試劑盒純化酶切后的產(chǎn)物。最后得到用于連接的目的片段和載體,用瓊脂糖凝膠鑒定一下,條帶的亮度,建議加個marker,可以估算一下DNA的分子質(zhì)量,以便于下一步的連接。 3.連接體系的確定就看連接酶說明書上的就行,目的片段和載體的比例如何確定的呢,看你的目的片段和載體的大小了,如果相差的多,目的片段:載體=3:1~10:1,如果差不多,就等比例加或者直接3:1做就行了。 4.最后涂板的時候,我的建議是你做上以下幾個對照,卡那霉素平板上加你的感受態(tài)細胞,這個是鑒定感受態(tài)細胞有沒有污染的;一個是載體自己連接 的,就是看看雙酶切有沒有切完全;一個是感受態(tài)細胞涂在LB平板上的,看 感受態(tài)細胞效率怎么樣;這些對照和你的轉(zhuǎn)化涂板同時做,就可以知道問題出在哪里了。 以上就是我的建議,希望對你有幫助。 |
金蟲 (小有名氣)
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我用雙酶切軟件算了一下你的實驗所需的酶量,發(fā)現(xiàn)SacI的酶用量應(yīng)該比BamHI高至少一倍以上。如果你用同樣的酶量進行酶切,效果恐怕不太好。 你能確保載體本身處理的很好嗎?克隆失敗最可能的原因就是載體雙酶切不徹底,導致連接反應(yīng)時載體的自連(載體自連的效率比外源片度插于載體的效率高至少10倍以上) 其實,判斷載體處理是否好的一個最可靠的方法就是:設(shè)置一個載體的自連接反應(yīng),然后轉(zhuǎn)化,看看克隆形成率(與目的連接進行比較),載體處理的好時,目的連接的克隆數(shù)較自連的克隆數(shù)高3倍以上。 |
木蟲 (正式寫手)


金蟲 (小有名氣)
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你克隆不成功的現(xiàn)象是什么? 如果是無克。耗强赡苁悄愕母惺軕B(tài)不好用,可以訂購新的 如果是無陽性克。何医ㄗh你做一個空載體的自連對照(即設(shè)計一個用水代替700bp片段的平行對照),如果自連對照也長很多克隆,表明你的載體處理有問題。如果自連和目的對照都無克隆,可能是感受態(tài)有問題或PCR產(chǎn)物的酶切有問題。 關(guān)于分子克隆中的酶切設(shè)計,我覺得一個在線軟件很好用,能夠精確計算雙酶切時所需的酶的精確用量(再也不用猜測酶量用得夠不夠了)還能推薦雙酶切的最優(yōu)buffer,使用很方便,而且現(xiàn)在還可以免費使用,用戶名和密碼都是test,你可以試一試,相信節(jié)省你做克隆的時間 |
金蟲 (小有名氣)
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雙酶切的在線軟件,用戶名和密碼都是test http://www.bioinfomatics.cn/enzyme/login.php |

木蟲 (著名寫手)
木蟲 (正式寫手)



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