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畢赤酵母電轉(zhuǎn)
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做了很久畢赤酵母GS115的電轉(zhuǎn)化。轉(zhuǎn)的是DNA片段,雙交換敲除基因。 轉(zhuǎn)化方法用的是Wu S, Letchworth G J. High efficiency transformation by electroporation of pichia pastoris pretreated with lithium acetate and dithiothreitol[J]. Biotechniques, 2004, 36(1): 152-155 1. 50mlYPD搖菌至OD 1.5~2.0 2. 收集菌體。每10ml作一管收集,即為一個(gè)感受態(tài) 3. 每管以8 mL LDST( 100 mM LiAc, 10 mM DTT,0.6 M sorbitol, and 10 mM Tris-HCl, pH 7.5)室溫處理30min 4. 4℃離心。以1ml預(yù)冷的1M 山梨醇洗三次 5. 最后以80微升預(yù)冷的1M 山梨醇重懸。感受態(tài)濃度約為10^10個(gè)細(xì)胞/mL 電轉(zhuǎn)條件1500V,25μF,200Ω(這個(gè)條件的電轉(zhuǎn)儀要去別的實(shí)驗(yàn)室借用,本實(shí)驗(yàn)有的電轉(zhuǎn)儀是1500V,36μF,186Ω,兩種條件都用過)。2mm電擊杯。 DNA量10~100ng,溶于5~10μL水中;旌虾蟊5min。(電轉(zhuǎn)儀預(yù)熱,電擊杯預(yù)冷)。電擊后迅速加入1ml 預(yù)冷的1M 山梨醇。30℃孵育1.5h。然后加入1mlYPD,150rpm搖2~3h。取200μL涂板(YPD含1M山梨醇,300μg/ml G418) 每次結(jié)果都是長3~4天無明顯克隆。5~6天時(shí)長滿背景克隆(有挑出驗(yàn)證過,都是假陽性)。陰性對(duì)照基本不長的。前后做了幾十次了。就得到2個(gè)陽性克隆。有很多時(shí)候,能長出幾個(gè)克隆。重新劃線于G418平板上,仍然可以長,但是提基因組PCR驗(yàn)證都不對(duì)。 做的都快吐了 求蟲友們給點(diǎn)意見![ Last edited by 皇馬鐵衛(wèi) on 2013-7-3 at 15:45 ] |
分子生化實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn)積累 | 蛋白表達(dá)純化鑒定精華 |

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鐵桿木蟲 (著名寫手)
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1. 你這個(gè)問題比較復(fù)雜,從描述上看,你的ligation做的如何呢?如果你的ligation效果不好,即使你的電轉(zhuǎn)效率再高,你拿到都是背景克隆。如果你的plasmid是transfer vector,可以考慮先用e.coli做完ligation,等提出很好的positive plasmid后再轉(zhuǎn)入酵母中。 2. 個(gè)人建議你做competent cell時(shí)用瓶子而不是管子,呵呵 |
至尊木蟲 (知名作家)

金蟲 (正式寫手)
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1.DNA是線性化后嗎?線性化后必須PCR純化,離子對(duì)電轉(zhuǎn)的效率影響很大 2.電壓電阻我覺得沒有問題,因?yàn)槲覀儗?shí)驗(yàn)室也是一樣的。 3.你使用G418抗性,那應(yīng)該是9K載體吧,可以試試使用MD平板,我們在使用zeocin抗性YPD平板時(shí),只是30℃孵育1.5h,直接涂布了。后面并沒有加入YPD等步驟。 4.如果3-4天都沒有克隆,那就不會(huì)有陽性克隆了(實(shí)驗(yàn)室經(jīng)驗(yàn))。 5.我們實(shí)驗(yàn)室是50mlYPD搖菌至OD 1.5~2.0,直接離心,去上清,加入40mlLDST(現(xiàn)配),30攝氏度孵育30min。LDST一定要現(xiàn)配,里面有DTT......不知道是不是這些問題 6.電擊杯是正常的嗎??之前使用有木有問題... 暫時(shí)看到這些問題....希望能幫助你 |
| 對(duì)了,這有篇文章,可以參考... |


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